來源與構建：該細胞系源自 CHO-K1 細胞（CHO 細胞的經典亞株），通過載體介導（如含 EF1α 啟動子的表達質粒）將 S2-HSA 融合基因導入細胞，經嘌呤霉素抗性篩選及單克隆純化獲得穩定株。“S2-HSA" 代表其表達的融合蛋白（S2 片段與人類血清白蛋白的融合產物），明確標識其功能特性，確保蛋白表達的均一性與持續性。

形態與增殖：體外培養呈典型上皮樣形態，貼壁生長，細胞呈多邊形，排列緊密，形態與親本 CHO-K1 細胞一致。在 37℃、5% CO?條件下，增殖穩定，傳代周期約 24-30 小時，可適應含 10% 胎牛血清的 F12K 培養基，兼容無血清培養體系，傳代 50 次以上仍能維持穩定形態與活性，貼壁能力強，為大規模培養提供便利。

表達特征：S2-HSA 融合蛋白主要分泌至細胞外培養基中，表達量可達 10-15μg/10?細胞 / 24 小時（通過 ELISA 檢測），長期傳代（＞40 代）后表達量波動＜10%。該融合蛋白保留 S2 片段的生物學活性與 HSA 的半衰期延長特性，能與特異性抗體結合，且翻譯后修飾（如糖基化）與天然蛋白一致，為功能研究與應用開發奠定基礎。

優勢：S2-HSA 融合蛋白表達穩定，分泌效率高，便于純化；遺傳背景清晰，與 CHO-K1 細胞同源性高，實驗重復性好；兼容貼壁與懸浮培養，可規模化生產，滿足工業化需求；蛋白翻譯后修飾接近天然狀態，生物活性保留完整，適合臨床前研究。

局限性：長期培養需維持抗性篩選壓力，增加培養成本；融合蛋白的糖基化模式與人類細胞存在細微差異，可能影響部分功能研究的外推性；對培養基中血清成分敏感，無血清適應需 6-8 周的馴化周期。

培養條件：基礎培養基為含 10% 胎牛血清的 F12K 培養基，添加嘌呤霉素（2μg/mL）維持抗性篩選，同時加入谷an酰胺與非必需氨基酸促進增殖。傳代時控制融合度在 60%-70%，用 EDTA - yi酶溫和消化，避免過度處理影響細胞活性。懸浮培養可采用無血清培養基，逐步降低血清濃度至 0.5%，最終細胞密度可達 3×10?個 /mL。

蛋白純化與檢測：收集培養上清后，通過 Protein A 親和層析純化 S2-HSA 融合蛋白，純度可達 95% 以上；通過 Western blot 驗證蛋白分子量，ELISA 檢測濃度，確保蛋白質量。凍存時使用含 10% DMSO 的wan全培養基，液氮保存，復蘇后傳代 2 次待狀態穩定后再用于實驗，保證結果可靠性。